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4.9: Dimorfismo sexual - Biologia

4.9: Dimorfismo sexual - Biologia


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O que, biologicamente, define se um organismo é feminino ou masculino, e por que isso importa? A questão é amplamente irrelevante em organismos unicelulares com vários tipos de acasalamento. Por exemplo, o micróbio Tetrahymena tem sete tipos de acasalamento diferentes, todos os quais parecem morfologicamente idênticos. Um indivíduo Tetrahymena célula pode acasalar com outro indivíduo de um tipo de acasalamento diferente, mas não com um indivíduo do mesmo tipo de acasalamento que ela. O acasalamento envolve fusão e, portanto, a identidade dos pais é perdida; as quatro células resultantes são de um ou outro dos tipos de acasalamento originais.

Em organismos multicelulares, os pais não se fundem uns com os outros. Em vez disso, eles produzem células, conhecidas como gametas, que o fazem. Além disso, em vez de dois ou mais tipos de acasalamento, geralmente existem apenas dois sexos, macho e fêmea. Isso, é claro, leva à questão: como definimos masculino e feminino? A resposta é superficialmente simples, mas suas implicações são profundas. Qual é o sexo definido pelo tamanho relativo das células em fusão que os organismos produzem. A célula de fusão maior é chamada de ovo e um organismo que produz ovos é chamada de fêmea. A célula de fusão menor, que geralmente é móvel (enquanto os ovos geralmente são imóveis), é chamada de espermatozoide e os organismos que os produzem são chamados de machos. Neste ponto, devemos observar os limites dessas definições. Existem organismos que podem mudar de sexo, o que é conhecido genericamente como hermafroditismo sequencial. Por exemplo, em vários peixes, é comum que todos os indivíduos se desenvolvam originalmente como machos; com base em pistas ambientais, o maior desses machos muda de sexo para se tornar fêmea. Alternativamente, um organismo pode produzir óvulos e espermatozóides; tal organismo é conhecido como hermafrodita.

A diferença de tamanho entre os gametas masculinos e femininos muda as apostas reprodutivas para os dois sexos. Simplesmente por causa do tamanho maior do óvulo, a fêmea investe mais energia em sua produção (por óvulo) do que o macho investe na produção de um espermatozóide. Portanto, é relativamente mais importante, do ponto de vista do sucesso reprodutivo, que cada ovo produza uma prole viável e fértil. À medida que aumenta o custo para a fêmea de gerar um óvulo, mais importante se torna o sucesso reprodutivo do óvulo. Como a produção de espermatozoides é relativamente barata, a pressão de seleção associada à sua produção é significativamente menor do que a associada à produção de um óvulo. O resultado final é que surge um conflito de interesses entre mulheres e homens. Este conflito de interesses aumenta à medida que aumenta a disparidade no investimento relativo por gameta ou descendência.

Este é o começo de uma economia evolucionária, uma análise de custo-benefício. Em primeiro lugar, existe o que é conhecido como o custo duplo do sexo, que está associado ao fato de que cada organismo assexuado pode produzir filhos, mas dois indivíduos que se reproduzem sexualmente devem cooperar para produzir filhos. Outros fatores mais específicos influenciam os custos reprodutivos de um indivíduo. Por exemplo, o custo para uma grande fêmea que põe um pequeno número de ovos pequenos que se desenvolvem independentemente é menor do que o de uma pequena fêmea que põe um grande número de ovos grandes. Da mesma forma, o custo para um organismo que alimenta e defende seus filhotes por algum período de tempo após o nascimento (ou seja, deixa o corpo da fêmea) é maior do que o custo para um organismo que põe ovos e os deixa para cuidar eles mesmos. Da mesma forma, o investimento de uma fêmea que cria seus filhotes por conta própria é diferente do investimento do macho que simplesmente fornece esperma e folhas. Como você pode imaginar, existem muitas estratégias reprodutivas diferentes (muito mais do que podemos considerar aqui), e todas elas têm implicações distintas. Por exemplo, um fator que contribui para a evolução social é que, onde criar filhos é particularmente caro biologicamente, a cooperação entre os sexos ou dentro de grupos de organismos na criação dos filhos pode melhorar o sucesso reprodutivo e aumentar o retorno sobre o investimento dos organismos envolvidos. É importante lembrar (e ser capaz de aplicar em situações específicas) que os investimentos reprodutivos e, portanto, os interesses evolutivos dos dois sexos podem divergir dramaticamente um do outro, e que tal divergência tem implicações evolutivas e comportamentais.

Considere, por exemplo, a situação em mamíferos placentários, nos quais a fertilização ocorre dentro da fêmea e relativamente poucos organismos novos nascem de qualquer fêmea. A fêmea deve comprometer recursos para sustentar os novos organismos desde a fertilização até o nascimento. Além disso, as fêmeas de mamíferos protegem seus filhotes e os alimentam com leite, usando glândulas mamárias especializadas. Dependendo da espécie, os jovens nascem em vários estágios de desenvolvimento, desde os ativos e brincalhões (como as cabras) aos relativamente desamparados (humanos). Durante o período em que a fêmea se alimenta e protege sua prole, ela fica mais estressada e vulnerável do que em outras ocasiões. Sob condições específicas, a cooperação com outras fêmeas pode ocorrer (como costuma acontecer em animais de carga) ou com um macho específico (normalmente o pai) pode aumentar muito a taxa de sobrevivência da mãe e da prole, bem como o sucesso reprodutivo do macho . Mas considere o seguinte: como um macho cooperante sabe que os descendentes que ele está ajudando a proteger e criar são seus? Gastar tempo protegendo e juntando comida para a prole não aparentada é tempo e energia desviada da busca do macho por uma nova parceira; isso reduzirá o sucesso reprodutivo geral do homem e, portanto, é um comportamento que provavelmente será selecionado contra. Levar essa lógica até sua conclusão pode levar a comportamentos como os machos protegendo as fêmeas das interações com outros machos.

Quando olhamos para o mundo natural, vemos uma ampla gama de comportamentos sexuais, desde homens que monopolizam sexualmente várias mulheres (poliginia) até poliandria, onde a mulher tem vários "parceiros" masculinos. Em algumas situações, nenhum vínculo de casal se forma entre homem e mulher, enquanto em outras os pares de homens e mulheres são estáveis ​​e (em grande parte) exclusivos. Em alguns casos, esses pares duram tempos extremamente longos; em outros, existe o que foi chamado de monogamia serial, pares se formam por um tempo, se separam e novos pares se formam (isso parece relativamente comum entre celebridades das artes performáticas). Às vezes, as fêmeas acasalam com vários machos, um comportamento que confunde os machos (eles não podem saber qual prole é deles) e, assim, reduz o infanticídio dos machos133.

É comum que, enquanto cuidam de seus filhotes, as fêmeas sejam reprodutivamente inativas. Onde um homem monopoliza uma mulher, a chegada de um novo homem que desloca o homem anterior pode levar a comportamentos como o infanticídio. Ao matar os filhotes, a fêmea se torna reprodutivamente ativa e capaz de produzir descendentes relacionados ao novo macho. Existem situações, por exemplo em algumas aranhas, em que o macho se permite ser comido durante a relação sexual como uma espécie de presente nupcial, o que impede que outros machos acasalem com uma fêmea (que está ocupada comendo) e aumenta o número de descendentes que resultam do acasalamento. Esta é uma estratégia reprodutiva eficaz para o macho se suas chances de acasalar com uma fêmea são baixas: melhor (evolutivamente) acasalar e morrer do que nunca ter acasalado. Uma variação interessante desse comportamento é descrita em um artigo de Albo et al.134. As aranhas Pisaura mirablis machos oferecem presentes nupciais às fêmeas, em parte, talvez, para evitar serem comidas durante a relação sexual. Claro, onde existe uma estratégia, existem estratégias contrárias. Em alguns casos, em vez de um inseto envolto em seda, os machos oferecem um presente sem valor, um objeto não comestível envolto em seda. As fêmeas não podem dizer inicialmente que o presente é inútil, mas rapidamente encerram o acasalamento se descobrirem que sim. Isso reduz as chances de sucesso reprodutivo de um homem. À medida que as estratégias masculinas enganosas se tornam comuns, as mulheres tendem a apresentar estratégias contrárias. Por exemplo, uma série de organismos femininos armazenam esperma de um acasalamento e podem ejetar esse esperma e substituí-lo por outro macho (ou múltiplos machos) obtido a partir de eventos de acasalamento subsequentes135. Há até evidências de que em alguns organismos, como as aves selvagens Gallus gallus, as fêmeas podem se inclinar contra a fertilização por certos machos, uma situação conhecida como escolha enigmática da fêmea, enigmática porque não é abertamente visível em termos de quem a fêmea acasala ou não acasala136. E assim por diante, cada estratégia reprodutiva leva, ao longo do tempo, a contra-medidas137. Por exemplo, em espécies em que um macho guarda um conjunto de fêmeas (seu harém), grupos de machos podem trabalhar juntos para distrair o macho guardião, permitindo que os membros de seu grupo acasalem com as fêmeas. Estas são apenas algumas das estratégias de acasalamento e reprodução que existem no mundo dos vivos138. Estudos moleculares que podem distinguir os pais de uma prole sugerem que a traição por machos e fêmeas não é desconhecida, mesmo entre as espécies altamente monogâmicas. A extensão da trapaça, é claro, depende do que está em jogo. Quanto mais negativos os efeitos sobre o sucesso reprodutivo, mais os processos evolucionários irão selecionar contra ele.

Em humanos, uma mulher pode ter no máximo uma gravidez por ano, enquanto um homem totalmente irresponsável poderia, pelo menos em teoria, fazer um grande número de mulheres grávidas durante um período de tempo semelhante. Além disso, o custo biológico de geração de descendentes é substancialmente maior para a mulher, em comparação com o homem139. Existe um perigo baixo, mas real, de morte da mãe durante a gravidez, enquanto os homens não são tão vulneráveis, pelo menos neste contexto. Portanto, se a fêmea vai ter uma prole, seria de seu interesse evolutivo que essa prole seja o mais robusta possível, o que significa que é provável que sobreviva e se reproduza. Como a mulher pode influenciar esse resultado? Uma abordagem é controlar a fertilidade, ou seja, a probabilidade de que um “encontro reprodutivo” resulte em gravidez. Isso é realizado fisiologicamente, de modo que as chances de gravidez aumentam quando a mulher tem recursos suficientes para levar a gravidez até o fim. Deve-se notar que essas não são decisões conscientes por parte da mulher, mas respostas fisiológicas a vários sinais. Existem vários exemplos no mundo biológico em que as fêmeas podem controlar se um determinado acasalamento é bem-sucedido, ou seja, se produz descendentes. Por exemplo, as aves selvagens fêmeas são capazes de influenciar o sucesso de um evento de acasalamento em favor dos machos dominantes ao ejetar ativamente o esperma de machos subdominantes após o acasalamento com um macho mais dominante, um evento de acasalamento que provavelmente resultará em uma prole mais robusta, isto é , a prole com maior probabilidade de sobreviver e se reproduzir140. Pode-se argumentar que o desenvolvimento de várias formas de contracepção é mais uma faceta desse tipo de comportamento, mas uma faceta em que as mulheres (e os homens) controlam conscientemente os resultados reprodutivos.


4.9: Dimorfismo sexual - Biologia

Masculino (♂) é o sexo de um organismo que produz o gameta conhecido como esperma, que se funde com o gameta feminino maior, [1] [2] [3] ou óvulo, no processo de fertilização. Um organismo masculino não pode se reproduzir sexualmente sem acesso a pelo menos um óvulo de uma mulher, mas alguns organismos podem se reproduzir sexualmente e assexuadamente. [4] A maioria dos mamíferos machos, incluindo humanos do sexo masculino, tem um cromossomo Y, [5] [6] que codifica a produção de grandes quantidades de testosterona para desenvolver os órgãos reprodutores masculinos. Nem todas as espécies compartilham um sistema comum de determinação do sexo. Na maioria dos animais, incluindo humanos, o sexo é determinado geneticamente, no entanto, espécies como Cymothoa exigua mude de sexo dependendo do número de mulheres presentes nas proximidades. [7]

Masculino também pode ser usado para se referir ao gênero.

Visão geral

A existência de dois sexos parece ter sido selecionada independentemente em diferentes linhagens evolutivas (ver evolução convergente). [8] [9] O padrão repetido é a reprodução sexuada em espécies isogâmicas com dois ou mais tipos de acasalamento com gametas de forma e comportamento idênticos (mas diferentes em nível molecular) para espécies anisogâmicas com gametas de tipos masculino e feminino para espécies oogâmicas em em que o gameta feminino é muito maior do que o masculino e não tem capacidade de se mover. Há um bom argumento de que esse padrão foi impulsionado pelas restrições físicas nos mecanismos pelos quais dois gametas se juntam conforme necessário para a reprodução sexual. [10]

Consequentemente, o sexo é definido entre as espécies pelo tipo de gametas produzidos (ou seja: espermatozóides vs. óvulos) e as diferenças entre machos e fêmeas em uma linhagem nem sempre são preditivas de diferenças em outra. [9] [11] [12]

O dimorfismo masculino / feminino entre organismos ou órgãos reprodutivos de sexos diferentes não se limita a animais, os gametas masculinos são produzidos por quitrídeos, diatomáceas e plantas terrestres, entre outros. Em plantas terrestres, fêmea e macho designam não apenas os organismos e estruturas produtoras de gametas femininos e masculinos, mas também as estruturas dos esporófitos que dão origem às plantas masculinas e femininas. [ citação necessária ]

Símbolo e uso

Símbolo

Um símbolo comum usado para representar o sexo masculino é o símbolo de Marte ♂, um círculo com uma seta apontando para o nordeste. O ponto de código Unicode é:

U + 2642 ♂ SINAL DE MACHO (HTML e amp # 9794 · & ampmale)

O símbolo é idêntico ao símbolo planetário de Marte. Foi usado pela primeira vez para denotar sexo por Carl Linnaeus em 1751. O símbolo às vezes é visto como uma representação estilizada do escudo e da lança do deus romano. Marte. De acordo com Stearn, no entanto, esta derivação é "fantasiosa" e todas as evidências históricas favorecem "a conclusão do erudito clássico francês Claude de Saumaise (Salmasius, 1588-1683)" de que é derivada θρ, a contração de um nome grego para o planeta Marte, que é Thouros. [13]

Uso

Além de seu significado no contexto da biologia, macho também pode se referir ao gênero [14] ou à forma dos conectores. [15] [16]

Determinação do sexo

O sexo de um determinado organismo pode ser determinado por vários fatores. Eles podem ser genéticos ou ambientais, ou podem mudar naturalmente durante o curso da vida de um organismo. Embora a maioria das espécies tenha apenas dois sexos (masculino ou feminino), [8] [9] [17] os animais hermafroditas, como os vermes, têm órgãos reprodutivos masculinos e femininos. [18]

Determinação genética

A maioria dos mamíferos, incluindo humanos, são geneticamente determinados como tal pelo sistema de determinação de sexo XY, onde os machos têm um cromossomo sexual XY (em oposição a XX). Também é possível em uma variedade de espécies, incluindo humanos, ser do sexo masculino XX ou ter outros cariótipos. Durante a reprodução, um macho pode dar um espermatozóide X ou um espermatozóide Y, enquanto uma fêmea pode dar apenas um óvulo X. Um espermatozoide Y e um óvulo X produzem um macho, enquanto um espermatozoide X e um óvulo X produzem uma fêmea. [19]

A parte do cromossomo Y responsável pela masculinidade é a região determinante do sexo do cromossomo Y, o SRY. [20] O SRY ativa Sox9, que forma alças feedforward com FGF9 e PGD2 nas gônadas, permitindo que os níveis desses genes permaneçam altos o suficiente para causar o desenvolvimento masculino [21] por exemplo, Fgf9 é responsável pelo desenvolvimento do espermático cordões e a multiplicação das células de Sertoli, ambas cruciais para o desenvolvimento sexual masculino. [22]

O sistema de determinação de sexo ZW, em que os machos têm um cromossomo sexual ZZ (em oposição a ZW), pode ser encontrado em pássaros e alguns insetos (principalmente borboletas e mariposas) e outros organismos. Membros da ordem dos insetos Hymenoptera, como formigas e abelhas, são freqüentemente determinados por haplodiploidia, onde a maioria dos machos são haplóides e as fêmeas e alguns machos estéreis são diplóides. [ citação necessária ]

Determinação ambiental

Em algumas espécies de répteis, como crocodilos, o sexo é determinado pela temperatura na qual o ovo é incubado. Outras espécies, como alguns caracóis, praticam a mudança de sexo: os adultos começam machos e depois tornam-se fêmeas. [23] Em peixes-palhaço tropicais, o indivíduo dominante em um grupo torna-se fêmea, enquanto os outros são machos. [24]

Em alguns artrópodes, o sexo é determinado pela infecção. Bactérias do gênero Wolbachia alteram sua sexualidade, algumas espécies consistem inteiramente de indivíduos ZZ, com sexo determinado pela presença de Wolbachia. [ citação necessária ]

Características sexuais secundárias

Nas espécies com dois sexos, os machos podem diferir das fêmeas de outras maneiras além da produção de espermatozóides.

Em muitos insetos e peixes, o macho é menor que a fêmea.

Em plantas com sementes, que exibem alternância de gerações, as partes feminina e masculina estão ambas incluídas no órgão sexual esporófito de um único organismo.

Em mamíferos, incluindo humanos, os machos são geralmente maiores do que as fêmeas. [25]

Em humanos, os homens têm mais pelos corporais e massa muscular. [26]

Nos pássaros, o macho geralmente exibe uma plumagem colorida que atrai as fêmeas. [27]


Reconhecimento de espécies e dimorfismo sexual em Procônsul e Rangwapithecus *

A taxonomia dos primeiros gêneros hominóides do Mioceno Procônsul e Rangwapithecus é reexaminado. O reconhecimento do dimorfismo sexual e a identificação dos dimorfos sexuais entre os espécimes caninos é considerado um elemento importante na classificação dos espécimes em fenômenos e na alocação destes aos hipodigmas de espécies. Proponho que espécimes de Rusinga e Mfwangano previamente identificados como Proconsul africanus, incluindo o conhecido crânio de 1948, são na verdade mulheres de P. nyanzae. P. africanus os espécimes de Songhor e o local-tipo de Koru diferem dos espécimes de Rusinga e Mfwangano anteriormente colocados em P. africanus. De acordo, P. africanus sensu stricto é restrito a Koru e Songhor e Proconsul nyanzae restringe-se a Rusinga e Mfwangano. Caracterizações anteriores de P. africanus foram baseados quase inteiramente em espécimes de Rusinga e, portanto, agora devem ser aplicados a fêmeas P. nyanzae em vez da paleobiologia de P. africanus e P. nyanzae agora deve ser reconsiderado. Como resultado da reatribuição do Rusinga Procônsul espécimes, P. nyanzae exibe graus de variabilidade métrica pós-canina excedendo aqueles de catarrinos vivos. É sugerido que isso reflete em parte uma verdadeira característica da espécie, talvez relacionada a uma quantidade excepcional de dimorfismo de tamanho, e em parte um artefato de preservação relacionado à natureza acumulada no tempo da amostra fóssil. Esses resultados têm implicações para a sistemática de outras espécies de hominóides do Mioceno.


Materiais e métodos

Área de estudo e coleta de dados

O local de estudo, Alax Zuoqi (38,85 ° N, 105,63 ° E 1448 m acima do nível do mar), Mongólia Interior, China está localizado na margem nordeste do Deserto de Tengger. A forma de terra predominante é a pastagem semidesértica com uma cobertura vegetal (principalmente grama) de menos de 15% [16]. O clima é semi-árido com precipitação média anual de 207,5 ± 9,6 mm (n = 30 anos) e temperatura média anual de 8,7 ± 0,1 ° C (n = 30 anos). Um único quadrado de recaptura de marca de 50 m × 50 m com uma zona tampão de 20 m foi estabelecido em abril de 2008.

A quadratura foi visitada mensalmente entre abril e outubro (durante o primeiro terço do mês), de 2008 a 2010. Os lagartos foram coletados manualmente e numerados com um clipe único no dedo do pé, e seu sexo foi determinado pela presença ou ausência de hemipenos. . Como era difícil distinguir lagartos machos e fêmeas até que os hemipenos estivessem bem desenvolvidos, o sexo dos juvenis não foi determinado até eles terem 3 meses de idade. As seguintes medidas foram feitas para cada lagarto: comprimento da cauda do SVL (TL), largura da cabeça (HW) e LL (do carpo até o cotovelo). Lagartos capturados pela primeira vez como filhotes ou filhotes de um ano podiam ser envelhecidos com precisão (em meses) e foram usados ​​na análise a seguir. Os animais foram liberados no local da captura após as medições.

Dimorfismo de tamanho sexual

Todos os lagartos para os quais o sexo e a idade puderam ser determinados foram usados ​​na análise SSD. Para cada classe de idade, o tamanho corporal geral e outras medidas proporcionais foram comparados entre os dois sexos. A análise de variância (ANOVA) foi usada para examinar a diferença de SVL entre lagartos machos e fêmeas da mesma categoria de idade, enquanto a análise de covariância (ANCOVA) (usando SVL como uma covariável) foi usada para examinar as diferenças de sexo em TL, LL e HW. Para determinar se o padrão SSD variou entre as classes de idade, ANOVA e ANCOVA (usando SVL como uma covariável) foram usados ​​com idade e sexo como fatores e outras características de comprimento como variáveis ​​dependentes.

Taxa de crescimento

O crescimento de machos e fêmeas em SVL em condições naturais foi comparado usando duas abordagens. Primeiro, para cada categoria de idade, as taxas de crescimento linear entre dois censos foram comparadas diretamente. A taxa de crescimento foi estimada subtraindo o SVL inicial do SVL final e dividindo pelo tempo decorrido. Em seguida, a correlação entre a taxa de crescimento e o SVL médio na captura inicial e final foi examinada para cada categoria de idade. Se houvesse correlação significativa, ANCOVA (usando SVL médio como uma covariável, sexo como um fator) foi usado para detectar a diferença na taxa de crescimento entre os sexos, caso contrário, ANOVA foi usado. Intervalos de captura menores que 15 dias e maiores que 60 dias não foram considerados.

Na segunda abordagem, vários modelos de crescimento foram ajustados e comparados entre lagartos machos e fêmeas. Primeiro calculamos a taxa de crescimento específico do tamanho (SGR) como a taxa de crescimento dividida pelo SVL médio de captura inicial e final [18]. Em seguida, ajustamos o SGR e o SVL dos dois sexos aos modelos logísticos de crescimento de Gompertz e von Bertalanffy, conforme descrito em Johnston [7]. O modelo logístico produziu o maior valor de R 2 a partir de uma regressão linear dos dados originais e foi escolhido como o melhor modelo (Tabela 1). Os dados de SVL de lagartos envelhecidos com precisão (em meses) foram ajustados ao melhor modelo e o comprimento assintótico (A) e a taxa de crescimento característica (k) foram estimados e comparados diretamente entre os sexos. O SVL do menor recém-nascido medido foi definido como o tamanho na idade zero (25,98 mm para ambos os sexos), e o tempo absoluto foi convertido em 'meses de crescimento' subtraindo o período de dormência de inverno (final de outubro ao final de março seguinte, cerca de 5 meses).

Sobrevivência

A sobrevivência foi determinada pela presença contínua de um lagarto em censos sequenciais. Quando um lagarto estava ausente de um censo e nunca mais foi visto, foi tratado como uma mortalidade na primeira ausência. A emigração de curto alcance foi verificada procurando indivíduos marcados na zona tampão ao redor do quadrado. A sobrevivência dos ovos e a taxa de eclosão não foram investigadas neste estudo. A proporção sexual primária foi assumida como sendo 1∶1. Tábuas de vida específicas para cada sexo foram estabelecidas usando a estimativa de sobrevivência específica para a idade (lx), taxa de mortalidade (qx) e expectativa de vida (ex), seguindo Sun [19].

Análise estatística

Todos os dados foram testados quanto à normalidade e homogeneidade das variâncias e foram transformados em ln quando necessário para atingir as condições de uso de testes paramétricos. Os testes estatísticos foram realizados no SPSS 19.0 para Windows. Os valores são expressos como médias ± SE e P& lt0,05 foi considerado estatisticamente significativo.

Declaração de ética

Nossos procedimentos experimentais obedeceram às leis atuais sobre bem-estar animal e pesquisa na China e foram especificamente aprovados pelo Comitê de Ética em Pesquisa Animal da Universidade de Lanzhou. A captura e marcação de animais foram autorizadas pelo Ministério da Educação da China.


4.9: Dimorfismo sexual - Biologia

Masculino (♂) é o sexo de um organismo que produz o gameta conhecido como esperma, que se funde com o gameta feminino maior, [1] [2] [3] ou óvulo, no processo de fertilização. Um organismo masculino não pode se reproduzir sexualmente sem acesso a pelo menos um óvulo de uma mulher, mas alguns organismos podem se reproduzir sexualmente e assexuadamente. [4] A maioria dos mamíferos machos, incluindo humanos do sexo masculino, tem um cromossomo Y, [5] [6] que codifica a produção de grandes quantidades de testosterona para desenvolver os órgãos reprodutores masculinos. Nem todas as espécies compartilham um sistema comum de determinação do sexo. Na maioria dos animais, incluindo humanos, o sexo é determinado geneticamente, no entanto, espécies como Cymothoa exigua mude de sexo dependendo do número de mulheres presentes nas proximidades. [7]

Masculino também pode ser usado para se referir ao gênero.

A existência de dois sexos parece ter sido selecionada independentemente em diferentes linhagens evolutivas (ver evolução convergente). [8] [9] O padrão repetido é a reprodução sexuada em espécies isogâmicas com dois ou mais tipos de acasalamento com gametas de forma e comportamento idênticos (mas diferentes no nível molecular) para espécies anisogâmicas com gametas de tipos masculino e feminino para espécies oogâmicas em em que o gameta feminino é muito maior do que o masculino e não tem capacidade de se mover. Há um bom argumento de que esse padrão foi impulsionado pelas restrições físicas nos mecanismos pelos quais dois gametas se juntam conforme necessário para a reprodução sexual. [10]

Consequentemente, o sexo é definido entre as espécies pelo tipo de gametas produzidos (ou seja: espermatozóides vs. óvulos) e as diferenças entre machos e fêmeas em uma linhagem nem sempre são preditivas de diferenças em outra. [9] [11] [12]

O dimorfismo masculino / feminino entre organismos ou órgãos reprodutivos de sexos diferentes não se limita a animais, os gametas masculinos são produzidos por quitrídeos, diatomáceas e plantas terrestres, entre outros. Em plantas terrestres, fêmea e macho designam não apenas os organismos e estruturas produtoras de gametas femininos e masculinos, mas também as estruturas dos esporófitos que dão origem às plantas masculinas e femininas. [ citação necessária ]

Símbolo

Um símbolo comum usado para representar o sexo masculino é o símbolo de Marte ♂, um círculo com uma seta apontando para o nordeste. O ponto de código Unicode é:

U + 2642 ♂ SINAL MASCULINO (HTML e amp # 9794 · & ampmale)

O símbolo é idêntico ao símbolo planetário de Marte. Foi usado pela primeira vez para denotar sexo por Carl Linnaeus em 1751. O símbolo às vezes é visto como uma representação estilizada do escudo e da lança do deus romano. Marte. De acordo com Stearn, no entanto, esta derivação é "fantasiosa" e todas as evidências históricas favorecem "a conclusão do erudito clássico francês Claude de Saumaise (Salmasius, 1588-1683)" de que é derivada θρ, a contração de um nome grego para o planeta Marte, que é Thouros. [13]

Uso

Além de seu significado no contexto da biologia, macho também pode se referir ao gênero [14] ou à forma dos conectores. [15] [16]

O sexo de um determinado organismo pode ser determinado por vários fatores. Eles podem ser genéticos ou ambientais, ou podem mudar naturalmente durante o curso da vida de um organismo. Embora a maioria das espécies tenha apenas dois sexos (masculino ou feminino), [8] [9] [17] os animais hermafroditas, como os vermes, têm órgãos reprodutivos masculinos e femininos. [18]

Determinação genética

A maioria dos mamíferos, incluindo humanos, são geneticamente determinados como tal pelo sistema de determinação de sexo XY, onde os machos têm um cromossomo sexual XY (em oposição a XX). Também é possível em uma variedade de espécies, incluindo humanos, ser do sexo masculino XX ou ter outros cariótipos. Durante a reprodução, um macho pode dar um espermatozóide X ou um espermatozóide Y, enquanto uma fêmea pode dar apenas um óvulo X. Um espermatozoide Y e um óvulo X produzem um macho, enquanto um espermatozoide X e um óvulo X produzem uma fêmea. [19]

A parte do cromossomo Y responsável pela masculinidade é a região determinante do sexo do cromossomo Y, o SRY. [20] O SRY ativa Sox9, que forma alças feedforward com FGF9 e PGD2 nas gônadas, permitindo que os níveis desses genes permaneçam altos o suficiente para causar o desenvolvimento masculino [21] por exemplo, Fgf9 é responsável pelo desenvolvimento do espermático cordões e a multiplicação das células de Sertoli, ambas cruciais para o desenvolvimento sexual masculino. [22]

O sistema de determinação de sexo ZW, em que os machos têm um cromossomo sexual ZZ (em oposição a ZW), pode ser encontrado em pássaros e alguns insetos (principalmente borboletas e mariposas) e outros organismos. Membros da ordem dos insetos Hymenoptera, como formigas e abelhas, são freqüentemente determinados por haplodiploidia, onde a maioria dos machos são haplóides e as fêmeas e alguns machos estéreis são diplóides. [ citação necessária ]

Determinação ambiental

Em algumas espécies de répteis, como crocodilos, o sexo é determinado pela temperatura na qual o ovo é incubado. Outras espécies, como alguns caracóis, praticam a mudança de sexo: os adultos começam machos e depois tornam-se fêmeas. [23] Em peixes-palhaço tropicais, o indivíduo dominante em um grupo torna-se fêmea, enquanto os outros são machos. [24]

Em alguns artrópodes, o sexo é determinado pela infecção. Bactérias do gênero Wolbachia alteram sua sexualidade, algumas espécies consistem inteiramente de indivíduos ZZ, com sexo determinado pela presença de Wolbachia. [ citação necessária ]

Nas espécies com dois sexos, os machos podem diferir das fêmeas de outras maneiras além da produção de espermatozóides.

Em muitos insetos e peixes, o macho é menor que a fêmea.

Em plantas com sementes, que exibem alternância de gerações, as partes feminina e masculina estão ambas incluídas no órgão sexual esporófito de um único organismo.

Em mamíferos, incluindo humanos, os machos são geralmente maiores do que as fêmeas. [25]

Em humanos, os homens têm mais pelos corporais e massa muscular. [26]

Nos pássaros, o macho geralmente exibe uma plumagem colorida que atrai as fêmeas. [27]


Dimorfismo sexual na produção de interferon-tau por embriões bovinos derivados in vivo

O interferon-tau (IFN-tau) é um fator anti-luteolítico responsável por prevenir a regressão do corpo lúteo materno (CL) durante o início da gestação de bovinos. Embriões bovinos produzidos in vitro (IVP) produzem primeiro IFN-tau como blastocistos. No presente estudo, examinamos se a produção sexualmente dimórfica de IFN-tau, que é observada entre blastocistos PIV, também ocorre entre blastocistos produzidos in vivo, e se essa diferença entre os sexos persiste até o dia 14, quando o silenciamento de um dos O cromossomo X no trofectoderma está completo. Os embriões foram retirados de bovinos superovulados e criados por IA. Os blastocistos (63 machos, 62 fêmeas) recuperados entre os dias 8,5 e 9,5 de gravidez foram cultivados individualmente. Não foram observadas diferenças entre machos e fêmeas em seu estágio de desenvolvimento ou qualidade no início, durante e no final da cultura. Embriões fêmeas produziram mais IFN-tau do que machos em 24 horas (valores médios, machos: 16,6 +/- 3,7, fêmeas: 49,4 +/- 9,0 pg por embrião P & lt 0,05) e 48 horas (masculino: 189,8 +/- 37,1, fêmea: 410,9 +/- 66,6 pg por embrião P & lt 0,05). No entanto, a variabilidade na produção de IFN-tau entre blastocistos individuais foi tão grande que a secreção de IFN-tau provavelmente não terá valor como meio não invasivo de prever o sexo do embrião. Quando os conceptos foram recuperados no dia 14, os machos alongados (n = 25) e as fêmeas (n = 24) eram semelhantes em dimensão e não diferiam em sua produção de IFN-tau após 4,5 horas (masculino: 2.550 +/- 607, feminino: 2.376 +/- 772 ng por concepto) e 24 horas (masculino: 12.056 +/- 2.438, feminino: 8.447 +/- 1.630 ng por concepto) de cultura. Thus, sexual dimorphism in IFN-tau production is observed in both IVP and in vivo-produced expanded blastocysts, but is lost by day 14 of in vivo development.


Determinação do sexo

The sex of a particular organism may be determined by a number of factors. These may be genetic or environmental, or may naturally change during the course of an organism's life. ⎥]

Most animal species that reproduce sexually have only two sexes (either male or female). ⎦] ΐ]

In some species females can coexist with hermaphrodites, a system gynodioecy. ⎥]

Genetic determination

The sex of most mammals, including humans, is genetically determined by the XY sex-determination system where males have X and Y (as opposed to X and X) sex chromosomes. During reproduction, the male contributes either an X sperm or a Y sperm, while the female always contributes an X egg. A Y sperm and an X egg produce a male, while an X sperm and an X egg produce a female. The ZW sex-determination system, where males have ZZ (as opposed to ZW) sex chromosomes, is found in birds, reptiles and some insects and other organisms. ⎥]


GROWTH PATTERN, REPRODUCTIVE PERFORMANCE AND SEASONAL SENSITIVITY OF BOVAN NERA AND ISA BROWN PARENT-STOCK CHICKENS IN IBADAN NIGERIA

Parent stocks (PS) of exotic hybrids have contributed immensely to commercial poultry production in Nigeria. Their continued optimal utilization depends on their performance test. Information on performance indices of PS layer breeds in South-West Nigeria is however limited. The growth, reproductive performance and seasonal sensitivity of Bovan Nera (BN) and Isa Brown (IB) hybrids were evaluated.

Secondary data on 24 batches of PS of each of BN and IB kept over a period of 10 years (1999- 2008) in Ajanla Farms, Ibadan were used. Average batch population was 3896 pullets and 600 cockerels at point-of-lay. Records on Body Weight (BW), Age, Hen-Day-Production (HDP), Egg Weight (EWt), Egg fertility (EF), Egg Hatchability (EH), Pullet Day-Old Chicks produced (PDOC) and Hatching Rejects (HR) in four seasons: Early-Wet (EW, April-July) Late-Wet (LW, August-October) Early-Dry (ED, November-January) and Late-Dry (LD, February- March) were obtained. Data were standardized and analysed for growth, Age-at-first-egg (AFE), HDP characteristics, reproduction, seasonal sensitivity, genotype-season interaction using descriptive statistics, ANOVA, correlation and regression (p=0.05).

There was no significant difference in BW (g) and growth rate (g/day) between hybrids: 1724.8±562.8 and 1549.8±543.3 1.4±2.3 and 1.1±1.6 for BN and IB hens, respectively. Effect of seasons on AFE was not significant in both hybrids, but ED and LD seasons delayed AFE. The HDP values (%) recorded for BN (63.2) and IB (72.9) in ED were significantly higher than in other seasons. There were significant differences in EF (80.8 and 88.7%), EH (69.1 and 73.6%), PDOC (32.6 and 36.1%) and EWt (56.2 and 59.9 g) for BN and IB respectively in EW season. EF (86.2 and 89.5%) and EH (73.1 and 73.9%) in LW were highest within hybrids respectively. Phenotypic correlation (r) between Age and Hen Weight, Age and EWt, Hen Weight and EWt, EF and EH, EF and PDOC, and EH and PDOC were 0.78, 0.74, 0.68, 0.73, 0.72 and 0.98 in BN and 0.77, 0.52, 0.53, 0.69, 0.71, and 0.97 in IB respectively. The positive and significant correlation between HR and EWt (r = 0.14 and 0.13), for BN and IB respectively, indicated increase in HR as EWt increased. The environmental performance in body weight of both hybrids was significantly depressed before 10 weeks in cocks and throughout the life cycle of hens, except at 10 to 16 weeks in the BN hen. Performance depression was also observed in HDP (-10.2%), EF (-6.9%) and EH (-14.4%) in IB, and EWt (- 2.9 and -3.2%) in both genotypes respectively over their life-time period. Predictions of BW by 222 Age (R = 0.85, 0.84), EWt by Age-in-production (R = 0.65, 0.65), and PDOC by EH (R = 0.99, 0.95) in both hybrids were significant at 25-75 weeks.

Hen day production, egg fertility, egg hatchability, pullet day-old chicks were higher in Isa Brown than Bovan Nera during the early-dry season. Body weight was higher in the cocks of both hybrids in early-dry and late-dry than in early-wet and late-wet seasons. The sensitivity of Isa Brown was lower than Bovan Nera except in hen weight.

Keywords: Bovan Nera, Chicken growth, Isa Brown

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Fly Leaf
Title
Resumo
Dedication
Acknowledgement
Certificação
Índice

List of Tables
List of Figures
Definições
Abbreviations

Chapter 2.0 LITERATURE REVIEW

2.1 Definition and background 4

2.2 National poultry population 4

2.3.0 Bovan Nera and ISA Brown strains 5

2.3.1 Origin and popularity 5

2.4.1 Growth of body parts 7

2.4.3 Growth performance in chicken 9

2.5 Stocking density and behavioural pattern 12

2.6 Deep litter system and chicken performance 12

2.7 Management operations in chicken breeding 12

2.8 Feed uptake and feeding 13

2.11 Egg traits in poultry 16

2.12 Egg production cycle 16

2.14 Persistency in egg production 20

2.15 Factors affecting egg production in deep litter flocks 21

2.16.0 Negative influences on egg production 21

2.16.1 Photo-refractoriness 21

2.18 Factors affecting egg size 24

2.19 Nutrition and egg weight 24

2.21 Storage of hatchable fertile eggs 25

2.22 Fertility of incubated chicken eggs 26

2.23 Hatchability of chicken eggs 26

2.24 Day-old chicks’ body weight 27

2.25 Hatchery wastes and disposal 27

2.26 Environment and chicken reproduction 27

2.27 Breeder hen selection and age 28

2.28 Hen testing and comparison parameters 28

2.29 Correlation among morphological traits 29

2.30 Evaluation of chicken flock 29

2.31 Genotype sensitivity 30

2.32 Genotype-environment interaction 31

3.3 Housing and population 34

3.5 Management operations 34

3.6 Seasonal weather conditions of research field 36

3.8 Experimental design 38

3.10 Regression models for growth and egg weight 39

3.11 Seasonal response model 39

3.12 Estimation of parameters 40

3.14 Statistical analysis 43

3.16 Test of hypotheses 43

A. The effect of seasons on growth, productive and reproductive performance Growth pattern of Bovan Nera and ISA Brown

4.1.1 Body weight of breeder cocks 44

4.1.2 Body weight of breeder hens 44

4.1.3 Growth pattern of breeder cocks 44

4.1.4 Growth pattern of breeder hens 45

Early sexual maturity characteristics of Bovan Nera and ISA Brown at first-egg

4.2.1 The effect of seasons on early sexual maturity characteristics at first-egg 50

4.2.3 Body weight of breeder pullets at first-egg 53

4.2.4 Body weight of breeder cockerels at first-egg 53

Full sexual maturity characteristics at peak hen-day production

4.3.1 Age at peak hen-day production 56

4.3.2 Body weight of cocks at peak hen-day production 56

4.3.3 Body weight of pullets at peak hen-day production 60

4.3.4 Hen-day production at peak hen-day production 60

4.3.5 Egg weight at peak hen-day production 63

4.3.6 Eggs set at peak hen-day production 63

4.3.7 Egg fertility at peak hen-day production 63

4.3.8 Egg hatchability at peak hen-day production 67

4.3.9 Pullet day-old chicks hatched at peak hen-day production 67

4.3.10 Hatching rejects at peak hen-day production 70

Productive performance characteristics of Bovan Nera and ISA Brown

4.4.1 Life-time productive performance 72

4.4.4 Persistency of egg production 74

Reproductive performance characteristics of Bovan Nera and ISA Brown

4.5.1 Life-time reproductive performance 76

4.5.2 Life-time percent of eggs set 76

4.5.3 Life-time fertility of eggs set 76

4.5.4 Life-time hatchability of eggs set 80

4.5.5 Life-time pullet day-old chicks hatched 82

4.5.6 Life-time hatching rejects 82

B. The effect of genotype growth pattern and reproductive parameters

4.6.1 Growth performance 87

4.6.2 Sexual dimorphism in body weight 87

4.6.3 Early sexual maturity characteristics 87

4.6.4 Body weight and egg characteristics at full sexual maturity 87

4.6.5 Life-time productive characteristics 88

4.6.6 Life-time reproductive characteristics 88

C. Genotype by season interaction and genotype sensitivity to seasons

4.7 Genotype by season interaction 97

4.8.1 Genotype sensitivity 101

4.8.2 Within-seasons sensitivity 101

4.8.3 Between-seasons sensitivity 102

D. Environmental performance of Bovan Nera and ISA Brown

4.9.1 Environmental performance evaluation 122

4.9.2 Performance depression 122

E. Relationships among growth, productive and reproductive parameters

4.10.1 Relationship among the growth parameters for cocks 128

4.10.2 Relationship among the growth parameters for hens 128

4.10.3 Phenotypic correlation among productive parameters 128

4.10.4 Phenotypic correlation among reproductive parameters 128 4.10.5 Relationship between cock weight and fertility of eggs set 129

4.10.6 Relationship between egg weight and hatchability of eggs set 129

F. Predictive models for growth, productive and reproductive parameters

4.11.1 Body weight and growth 142 4.2.2 Egg weight 142 4.12.3 Fertility and hatchability of eggs set 143

A. The effect of seasons on growth, productive and reproductive performance Growth pattern of Bovan Nera and ISA Brown

5.1.1 Body weight of breeder cocks 148

5.1.2 Body weight of breeder hens 148

5.1.3 Growth pattern of breeder cocks 149

5.1.4 Growth pattern of breeder hens 149

Early sexual maturity characteristics of Bovan Nera and ISA Brown at first-egg

5.2.1 The effect of seasons on early sexual maturity characteristics at first-egg 150

5.2.3 Body weight of breeder pullets at first-egg 150

5.2.4 Body weight of breeder cockerels at first-egg 151

Full sexual maturity characteristics at peak hen-day production

5.3.1 Age at peak hen-day production 152

5.3.2 Body weight of cocks at peak hen-day production 152

5.3.3 Body weight of pullets at peak hen-day production 153

5.3.4 Hen-day production at the peak of production 153

5.3.5 Egg weight at peak hen-day production 153

5.3.6 Eggs set at peak hen-day production 154

5.3.7 Fertility of eggs set at peak hen-day production 154

5.3.8 Hatchability of eggs set at peak hen-day production 154

5.3.9 Pullet day-old chicks hatched at peak hen-day production 155

5.3.10 Hatching rejects at peak hen-day production 155

Productive performance characteristics of Bovan Nera and ISA Brown

5.4.1 Life-time productive performance 156

5.4.2 Life-time hen-day production 156

5.4.3 Life-time egg weight 157

5.4.4 Persistency of egg production 157

Reproductive performance characteristics of Bovan Nera and ISA Brown

5.5.1 The effect of seasons on reproductive parameters 159

5.5.2 Life-time percent of eggs set 159

5.5.3 Life-time fertility of eggs set 159

5.5.4 Life-time hatchability of eggs set 160

5.5.5 Life-time pullet day-old chicks hatched 161

5.5.6 Life-time hatching rejects 161

B. The effect of genotype on growth pattern and reproductive parameters

5.6.2 Sexual dimorphism in body weight 162

5.6.3 Early sexual maturity characteristics at first-egg 163

5.6.4 Body weight and egg characteristics at peak hen-day production 163

5.6.5 Life-time productive performance 164

5.6.6 Life-time reproductive performance 165

C. Genotype by season interaction and genotype sensitivity to seasons

5.7.1 Genotype by season interaction 165

5.7.2 Implication for egg production and pullet day-old chicks hatched 167

5.8.0 Genotype sensitivity to seasons 168

5.8.1 Within-seasons sensitivity 168

5.8.2 Between-seasons sensitivity 170

D. Environmental performance of Bovan Nera and ISA Brown

5.9.1 Environmental performance evaluation 171

5.9.2 Performance depression 172

E. Relationships among growth, productive and reproductive parameters

5.10.1 Phenotypic correlation among the growth parameters 174

5.10.2 Phenotypic correlation among the productive parameters 175

5.10.3 Phenotypic correlation among the reproductive parameters 175

5.10.5 Relationship between cock weight and fertility of eggs set 176

5.10.6 Relationship between egg weight and hatchability of eggs set 177

F. Predictive models for growth, productive and reproductive parameters

4.11.1 Body weight and growth 178 4.12.2 Egg weight and hen-day production 179

4.12.3 Fertility and hatchability of eggs set 180

Chapter 6.0 CONCLUSION AND RECOMMENDATIONS

6.4 Areas for further research 185

7.2.1 Cock body weight depression of Bovan Nera and ISA Brown in hot-humid Ibadan environment 205

7.2.2 Hen body weight depression of Bovan Nera and ISA Brown in hot-humid Ibadan environment 206

7.2.3 Depression of age, hen-day production and egg weight of Bovan Nera and ISA Brown in hot-humid Ibadan environment 207

7.2.4 Depression of egg fertility and hatchability of Bovan Nera and ISA Brown in the hot-humid Ibadan environment 208

7.2.5 Seasonal stocking pattern, recommended stocking dates and onset of egg-lay in Bovan Nera and ISA Brown hybrids 209

7.2.6 Technical data on mean body weight, production and reproduction data on Bovan Nera Parent-stock flock raised on deep-litter system in the hot – humid Ibadan, South-West Nigeria 210

7.2.7 Technical data on mean body weight, production and reproduction data on ISA Brown Parent-stock flock raised on deep-litter system in the hot - humid Ibadan South-West Nigeria


Sexual Dimorphism in Zooplankton (Copepoda, Cladocera, and Rotifera)

In this review we consider sexual dimorphism in copepods, cladocerans, and rotifers. All three groups may be common components of freshwater and sometimes estuarine zooplankton communities, but only the copepods are generally found in marine zooplankton communities. To varying degrees, these three groups exhibit important differences between the sexes in size and in other secondary sexual characteristics that are not directly related to reproduc­ tion. For each group, we summarize the life cycle describe genetic, morpholo­ gical, physiological, and behavioral differences between the sexes and then discuss the evolution of these differences and their ecological implications. COPEPODA Life Cycle The planktonic copepods of marine and inland waters are composed almost entirely of individuals from two of the three free-living orders 0f the subclass Copepoda. The Calanoida are almost entirely planktonic. The Cyclopoida are primarily littoral and benthic but do include several widespread and abundant planktonic species. The few species of Harpacticoida found among the plank­ ton tend to be either vagabonds accidentally washed out from shore or indi- 0066-4162/83/1 120-0001$02.00 GILBERT & WILLIAMSON viduals that remain very closely associated with detritus, algae, or other substrates (151, 224). (32, 62), The life cycles of copepods are fundamentally different from

Diário

Revisão anual de ecologia, evolução e sistemática e revisões anuais do ndash


Sexual dimorphism in the neurophil of the preoptic area of the rat and its dependence on neonatal androgen

The stria terminalis sends fibres to a well circumscribed zone in the dorsal part of the preoptic area. This ‘strial part of the preoptic area’ contains cells with beaded, spine-poor dendrites arranged horizontally so as to intersect at right angles with the strial axons it also receives aminergic fibres from the reportedly noradrenergic plexus in the bed nucleus of the stria terminalis. The strial part of the preoptic area is separated from the ventral part of the strial bed nucleus by a compact mass of cells (the ‘round nucleus’) which, unlike the other two areas, does not receive either aminergic fibres or synapses from the strial axons.

The incidences of various types of synapses have been counted in the neuropil of the strial part of the preoptic area and in the region lying between the ventromedial and arcuate hypothalamic nuclei. Synapses on dendritic shafts outnumber those on dendritic spines in the ventromedial nucleus, and to an even greater degree in the preoptic area. In both regions fibres of amygdaloid origin passing through the stria terminalis establish synapses (identified by the electron dense reaction of orthograde degeneration two days after axotomy) on both dendritic shafts and (especially in the ventromedial nucleus) on spines.

There is no sexual dimorphism in the incidences of the shaft synapses or any of the synapses of amygdaloid origin in the preoptic area, and none in any category of synapse in the ventromedial nucleus. However, in the normal females the number of non-amygdaloid synapses on dendritic spines in the preoptic area is higher than in the male. The suggestion that this difference could be related to the ability of the female to maintain a cyclic pattern of gonadotrophin release and/or behavioural oestrus is supported by published work implicating the preoptic area in the control of ovulation and mating behaviour.

Castration of the male within 12 h of birth (but not at 7 days of age) causes an increase to the female level in the number of spine synapses and permits the development of a cyclic pattern of gonadotrophin release and the ability to show a progesterone facilitated increase in receptivity. Conversely, females treated on day 4 (but not on day 16) with 1.25 mg of testosterone propionate have a low number of spine synapses (in the male range) this treatment also abolishes the cyclic pattern of gonadotrophin release and the progesterone facilitated increase in receptivity.


Assista o vídeo: Dimorfismo Sexual de la Trucha y Tilapia Acuacultura (Fevereiro 2023).