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Que inseto é esse? (Índia)

Que inseto é esse? (Índia)


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Alguém pode me dizer que tipo de inseto (se for um) é esse… !! Ou é a pupa de algum inseto?

Bem, eu não acho que a coisa toda é o próprio inseto, parece ser apenas uma espécie de proteção ou abrigo que se move junto com a coisinha minúscula que continua surgindo e avançando para se mover.

Localização: Índia


Esta é principalmente uma suposição e sugestão vaga, uma vez que a imagem não é muito clara (seria necessário ver as larvas com mais detalhes). No entanto, mariposas bagworm (Psychidae), mariposas Case (Coleophoridae) e larvas Caddisfly (Trichoptera, quase exclusivamente aquática) constroem casos semelhantes. Eles constroem seus invólucros com seda e geralmente incluem detritos, seixos e outros materiais. Eu não ficaria surpreso se a larva em sua foto pertencesse a um dos dois primeiros táxons. Traças da lagarta e Caddisflies geralmente incluem muitos materiais externos em seus invólucros larvais, o que pode apontar para mariposas Case para seu espécime (que parece ter um invólucro mais fraco feito principalmente de seda).

Aqui estão duas fotos da primeira larva da mariposa Case do Reino Unido (Coleophora deauratella) seguido por uma mariposa Bagworm (Dahlica triquetrella), apenas como comparações. Se você fizer pesquisas de imagens no Google de "nome do grupo + larvas", verá muitos exemplos de como eles podem ser.

E apenas como um exemplo legal - as larvas costumam usar material aleatório espalhado para construir suas caixas, o que pode dar o seguinte resultado, se larvas de caddisfly forem criadas em um tanque contendo pedaços de ouro e pérolas. Para mais informações, consulte este link.


É um porta-caixa doméstico, uma espécie de larva de mariposa da família Tineidae que constrói essa caixa em torno de si mesma.

@fileunderwater é errado


Entomofagia

Entomofagia (/ ˌ ɛ n t ə ˈ m ɒ f ə dʒ i /, do grego ἔντομον éntomon, 'inseto' e φαγεῖν fago, 'comer') descreve um comportamento alimentar que inclui insetos. Além de criaturas não humanas, o termo também pode se referir à prática de comendo insetos entre os humanos.


Principais pragas de insetos que atacam Banana Tress na Índia e seu controle

Uma das frutas mais antigas conhecidas pela humanidade é a banana ou banana-da-terra. Eles pertencem ao gênero Musa. Várias espécies deste gênero (Musa chinensis, M. paradisiaca, M. sapientum) são encontradas em diferentes partes da Índia, Birmânia, China, Tailândia, etc. A banana também é cultivada em partes tropicais da África, América, Austrália e Filipinas. Na Índia, o cultivo de banana começou já em 600 a.C.

As condições tropicais são as mais adequadas para o cultivo da banana. Na Índia, os principais estados produtores de banana são Kerala, Tamil Nadu, Maharashtra, Gujrat e Assam. A banana madura contém uma boa quantidade de carboidratos e uma boa quantidade de cálcio, fósforo e ferro, também contém uma quantidade apreciável de vitamina C e minerais. A banana é considerada um alimento produtor de energia, a banana verde é usada para cozinhar e extrair cerveja.

Diferentes pragas de insetos foram relatadas em diferentes partes do mundo que são destrutivas para a cultura da banana. No entanto, na Índia, apenas algumas pragas realmente causam sérios danos à bananeira.

1. Cosmoplites Sordidus, Germere (The Banana Weevil):

É encontrada em todos os países produtores de banana do mundo, mas não foi relatada no Egito, Israel e Havaí. Na Índia, é encontrado em todo o país, especialmente em Tamil Nadu, Kerala, Karnataka, Maharashtra, Gujrat, Punjab, Rajasthan, Bihar, Orissa, West Bengal, Uttar Pradesh e Andhra Pradesh.

É uma das pragas mais destrutivas da banana. Tanto os adultos quanto as larvas causam danos à bananeira. O adulto alimenta-se dos pseudo caules e das larvas do rizoma (a parte aérea visível da banana é o pseudo caule que é a extensão da parte subterrânea, o rizoma).

O pseudo caule fica cheio de buracos enquanto o ponto de crescimento do rizoma é destruído, resultando em murchamento prematuro e falha no aparecimento de novos rebentos (brotos), respectivamente. A planta sobrevivente produz frutos subdimensionados. Os túneis feitos pelos gorgulhos são ocupados por bactérias e fungos, o que acelera o processo de apodrecimento.

Marcas de identificação:

O gorgulho adulto, de constituição robusta, tem cerca de 10 a 13 mm de comprimento. O corpo é preto ou marrom-avermelhado com focinho alongado arterialmente e ligeiramente curvo. Élitros curtos são estriados longitudinalmente.

A oviposição ocorre ao longo do ano. Os ovos são colocados individualmente na parte exposta (colar) ou na parte subterrânea do rizoma. A fêmea faz pequenas tocas retirando os tecidos ou dentro da bainha da folha. O ovo eclode em larvas em 5 a 8 dias.

A larva é apodus (sem pernas), amarelada, carnuda, fusiforme com cabeça avermelhada. O corpo mede 8 a 12 mm de comprimento. Ele perfura o rizoma e túneis dentro dele, alimentando-se dos tecidos do rizoma.

A vida larval dura cerca de 25 dias, depois que a pupação ocorre dentro dos túneis formados por larvas próximas à superfície externa do rizoma. A pupa dura de 5 a 6 dias. A pupação também pode ocorrer no solo. O adulto emerge da pupa e se esconde na bainha da folha do pseudo caule, alimentando-se de seus tecidos internos. Os adultos geralmente se alimentam à noite. Eles sobrevivem de um a dois anos e podem ficar sem comida por seis meses.

Ao controle:

1. O cultivo limpo ajuda a reduzir a população de gorgulhos.

2. Os sugadores infestados devem ser arrancados e destruídos.

3. Ventosas não infectadas para serem usadas na plantação.

4. A parte cortada do pseudo caule após a remoção do fruto deve ser coberta com uma camada de terra.

5. No momento do plantio, as covas devem ser tratadas com 5% de pó de BHC @ 60-80 g por cova.

Pulverizar ao redor do colarinho com Fenitrotion (0,1%) ou 0,05% de dieldrin ou 0,05% de endosulfan, 0,05% de fosfamidona, 0,05% de clorpirifos etc.

2. Odoiporoxjs l ongicollis, Olivier:

(A broca do caule da banana)

É uma praga séria da banana relatada em países como Índia, Birmânia, Sri Lanka, Bangladesh e Indonésia. Na Índia, é mais prevalente em estados como Bihar, West Bengal e Assam (Nordeste da Índia).

As larvas são mais destrutivas. Após a eclosão, as larvas se alimentam de tecidos da bainha da folha e, em seguida, perfuram o pseudo caule.

Um grande número de larvas entra em uma única planta, tornando o pseudo caule fraco, que começa a apodrecer e, finalmente, a árvore quebra quando enfrenta vento forte. Os insetos adultos também se alimentam dos tecidos da bainha das folhas, especialmente os que estão em decomposição.

Marcas de identificação:

Os adultos são robustos, gorgulho castanho-avermelhado ou preto, medindo 1,3 a 2 cm de comprimento.

O macho e a fêmea adultos após a emergência acasalam-se fora da árvore ou dentro da bainha da folha. O período de pré-oviposição dura de 28 a 30 dias. A praga se reproduz ao longo do ano, mas permanece mais ativa durante o verão e os meses das monções.

As fêmeas, pelo rostro, fazem uma fenda na bainha de 1 folha e colocam os ovos nas câmaras de ar. Um único ovo é colocado em uma câmara. Os ovos são cilíndricos, branco-amarelado, medindo 2 x 1 mm. Os ovos eclodem em 3 a 5 dias no verão e 5 a 8 dias no inverno. A larva é sem pernas (apodus), corpo mole, carnuda, enrugada e coberta com pelos castanhos.

A vida das larvas é de cerca de 26 dias no verão e 68 dias no inverno. Existem cinco instares larvais. A larva perfura o pseudo caule fazendo túneis dentro dele. Isso causa enfraquecimento e decomposição da parte afetada.

As larvas totalmente crescidas se acumulam enrolando materiais fibrosos curtos da bainha da folha ao seu redor. Ele se transforma em pupa dentro do túnel próximo à periferia do pseudo tronco. O período de pupa dura de 20 a 24 dias no verão e de 37 a 44 dias no inverno. O adulto se alimenta da parte interna da bainha da folha e de tecidos em decomposição. Vive cerca de dois anos.

1. Desenraizamento e queima da planta infestada.

2. A limpeza e a melhoria do saneamento do campo reduzem a população de pragas.

3. A inserção de comprimidos de fosfato de alumínio nas regiões basais espessas dos pseudocaules @ 1,5 g para cada pseudocaule (como sugerido por Dutt e Maiti, 1972) evita o ataque de pragas.

Pulverizar carbaril (0,2%) ou Endosulfan (0,05%) periodicamente, mantém a população da praga sob controle.


Principais insetos - pragas que atacam as goiabeiras na Índia e seu controle

A goiaba (Psidium guajava) é uma fruta comum do subconteúdo indiano. É um nativo da América tropical. Na Índia, foi introduzido no século 17 e agora é uma fruta doméstica, especialmente em Uttar Pradesh e Bihar.

A fruta é consumida em sua forma crua. Os frutos imaturos não são comestíveis, no entanto os frutos maduros e maduros são apreciados por pessoas de diferentes faixas etárias. O suco de goiaba é usado para fazer geleias, geleias, manteiga de frutas e xarope de açúcar.

Por meio da enxertia e hibridização, diferentes variedades de goiaba foram desenvolvidas. As goiabeiras são resistentes, pois podem suportar correntes de ar e tolerar as condições de solo variáveis. A goiaba contém uma boa quantidade de fósforo, cálcio e ferro de carboidratos. A fruta é muito rica em vitamina C e vitamina A. Já foram observadas mais de 80 espécies de insetos que, de uma forma ou de outra, afetam a qualidade e o rendimento da goiaba, porém poucas delas causam danos graves.

1. Dacus (= bactrocera) dorsalis hendel:

Dacus dorsalis é uma das principais pragas da goiaba e da manga. Também infesta pimenta berinjela, damasco, sapota, ber etc. Esta praga é encontrada em toda a Índia.

Tanto o adulto quanto o maggote causam danos à fruta. Os vermes destroem a polpa que, por sua vez, fica descolorida e produz mau cheiro. Manchas castanhas e podres aparecem na fruta atacada, que eventualmente cai. Adultos se alimentam de exsudações de frutas maduras. A perfuração produzida pela fêmea na superfície da fruta para postura de ovos abre caminho para que microorganismos tímidos entrem na fruta.

Marcas de identificação:

O inseto é marrom claro com asas transparentes e patas amarelas. A mosca da fruta é um pouco maior do que a mosca doméstica e tem uma constituição robusta.

As fêmeas colocam ovos na pele macia dos frutos que amadurecem. Os ovos são inseridos sob a casca das frutas. As moscas adultas emergem no mês de abril e começam a pôr ovos. O processo de postura do ovo continua por cerca de quatro meses, ou seja, até julho. Os ovos são colocados em grupos de 2 & # 8211 15 nos frutos hospedeiros. Durante o período adulto de quatro meses, uma fêmea botou de 600 a 800 ovos.

As larvas que emergem dos ovos se alimentam da polpa madura da fruta. A vida larval dura de 6 a 44 dias. O maggote maduro sai da fruta e cai no chão para formar pupa. A formação de pupa ocorre 4 a 6 polegadas abaixo da superfície do solo. A vida da pupa dura de 6 a 29 dias. O adulto emerge da caixa pupal. Eles são bons voadores.

Ao controle:

1. Os frutos caídos e infestados devem ser coletados e enterrados profundamente no solo.

2. Arar ao redor das árvores para expor a pupa a ser destruída pelo calor e predadores.

1. As moscas adultas podem ser capturadas e mortas por isca venenosa ou spray de isca (20 ml de malatião + 200 g de melaço em 20 litros de água)

2. As sebes ao redor das goiabeiras podem ser borrifadas com endosulfan (0,1%), carbaril (0,1%) ou Quinalphos (0,05%).

2. Indarbela tetraonis moore:

(Lagartas comedoras de casca / O broto e a broca da casca)

É uma praga comum da goiaba e está amplamente distribuída por todo o sub & continente indiano. Embora essa praga seja encontrada em várias partes da Índia como Bihar, Orissa, Haryana, Rajasthan, Madhya Pradesh, Maharashtra, Andhra Pradesh e Tamil Nadu, é mais comum e destrutiva em goiabeiras, especialmente em Punjab, Uttar Pradesh e no sul da Índia.

Além da goiaba, o inseto infesta plantas de manga, lichia, falsa, jamun, jaca, romã, ber e cítrica. O dano é causado pelas lagartas. A lagarta perfura a casca e o caule a uma profundidade de 15 a 25 μm e se alimenta de tecidos da casca. Os tecidos condutores são destruídos, afetando o crescimento da árvore e a produção de frutos.

A lagarta permanece escondida no furo durante o dia. À noite, ele sai e se alimenta da casca da árvore. A larva cobre o orifício e a área circundante por uma teia de seda, que fornece proteção e abrigo para a praga durante a alimentação. Uma única larva habita um furo, mas pode haver de 15 a 30 larvas em uma única árvore. Buracos na superfície do caule e galerias sedosas cheias de matéria fecal e excremento indicam a presença da praga.

Marcas de identificação:

O inseto adulto é uma mariposa marrom-clara, baixa e robusta. As asas anteriores apresentam marcações verticais de um marrom profundo, enquanto as posteriores são branco-acinzentadas. A envergadura da asa é de 46 a 50 mm no caso do sexo feminino e de 35 a 38 mm no caso do macho.

A postura dos ovos começa de abril a junho. As fêmeas põem ovos em cortes e fendas na casca da árvore hospedeira, em grupos de 15 a 25. Em 8 a 10 dias, as larvas eclodem dos ovos.

Às vezes, a larva se alimenta da casca. Eles formam lascas de ribbion e produzem fios de seda na superfície da casca. A larva mais avançada perfurou a madeira fazendo pequenos túneis no caule. Durante o dia, a larva permanece dentro do túnel, mas à noite sai para se alimentar da casca.

Uma larva totalmente crescida é de cor marrom sujo e mede 38 a 45 mm de comprimento. A vida larval dura de 10 a 11 meses. Depois disso, a larva pupa dentro das galerias durante os meses de março a abril. O período de pupa dura de 15 a 25 dias. Adulto emerge da pupa. Há uma única geração em um ano.

1. Os excrementos e as fezes, juntamente com a fita, como uma teia de seda, devem ser retirados da casca e da bunda, de modo que as lagartas escondidas sob eles sejam destruídas.

2. Água quente pode ser inserida no orifício através da seringa.

1. Depois de remover o excremento e a matéria fecal da casca da árvore, deve-se pulverizar uma emulsão de quinalfos a 0,1% ou clorpirifos a 0,5%.

2. A injeção de enderina (0,04%) ou BHC (0,2%) ou DDT (0,5%) e endosulfan (0,05%) no buraco pode matar a larva presente dentro do caule.

3. Algodão embebido em carbondissulfeto, clorofórmio ou gasolina deve ser inserido nos orifícios da casca da árvore. A abertura do buraco pode então ser coberta com lama.


Importância econômica dos insetos

Os insetos que produzem mel, cera, laca, tinturas e seda são comercialmente benéficos. Alguns insetos são muito úteis para destruir insetos prejudiciais.

1. Produtos comerciais:

Apis, as abelhas produzem milhões de toneladas de mel todos os anos, também dá cera de abelhas de seus favos.

Os benefícios das abelhas são cosmopolitas, não apenas na produção de mel e cera, mas também na polinização cruzada de muitas frutas e flores sem as quais essas plantas não poderiam existir. Tachardia, o inseto lac secreta lac comercial produzido a partir de glândulas tegumentares como uma cobertura protetora pelas fêmeas, a goma-laca é feita de lac na Índia.

Dactylopius, o inseto cochonilha do México é encontrado em cactos, corpos secos de fêmeas desse inseto escama são usados ​​para fazer tinturas de cochonilha. Bombyx e Eupterote são mariposas da seda, são criadas na Índia, China, Japão e Europa, suas larvas chamadas de bichos da seda giram casulo de seda crua, a fibra de seda é desenrolada e usada para fazer seda.

Nos países asiáticos, mais de 25 milhões de quilos de seda são produzidos anualmente. Élitros secos de dois besouros, Lytta e Mylabris, são usados ​​para fazer cantharidina, um poderoso afrodisíaco.

As larvas de duas moscas, Lucila e Phormia, são usadas na cura de feridas de ossos que não respondem a medicamentos, as larvas são colocadas em feridas de ossos e medula óssea, limpam tecidos supurantes e mortos, evitam o crescimento bacteriano e excretam alantoína que cura as feridas.

2. Insetos Predáceos Úteis:

Alguns insetos são predadores, eles se alimentam e destroem um grande número de insetos nocivos. Stagomantis, um louva-a-deus é voraz, alimenta-se de moscas, gafanhotos e lagartas, algumas das quais prejudiciais às colheitas. As larvas e adultos de Chilomenes, uma joaninha, se alimentam de pulgões que infectam os algodoeiros.

Novius, uma joaninha, destrói vermes que são pragas de laranjeiras e limoeiros. Epicauta é um besouro da bolha, ele deposita ovos onde ocorrem gafanhotos, as larvas em incubação entram em cápsulas de ovos de gafanhotos e comem uma grande quantidade de ovos. Calasoma, um besouro terrestre ataca muitos tipos de larvas lepidópteras que destroem cereais e algodão.

3. Insetos parasitas benéficos:

Alguns insetos parasitam insetos nocivos, eles geralmente colocam ovos nos corpos de larvas e adultos de insetos nocivos, os jovens ao eclodir dos ovos finalmente matam seus hospedeiros. As larvas de Tachina e moscas relacionadas são parasitas de larvas lepidópteras prejudiciais, como vermes do exército, que são prejudiciais aos cereais.

As larvas de moscas himenópteras e vespas carnívoras devoram pulgões em grande número. As moscas calcídeos e ichneumons são parasitas, pondo ovos no casulo e larvas de lepidópteros fitófagos. Apanteles, uma mosca himenóptero põe ovos em vermes-do-exército e vermes do bicudo, as larvas parasitas que roem a pele do hospedeiro.

4. Necrófagos:

Alguns insetos são necrófagos, comem matéria vegetal e animal morto, evitando assim a decomposição. Algumas formigas e larvas de algumas moscas podem devorar carcaças inteiras de animais.

B. Insetos nocivos:

Comparado com os insetos benéficos, o número de insetos prejudiciais é muito grande.

1. Insetos transmissores de doenças:

Muitos tipos de mosquitos, moscas, pulgas, piolhos e percevejos transmitem doenças ao homem e aos animais domésticos, já foram descritos anteriormente em insetos e doenças.

2. Insetos domésticos:

A comida humana é estragada por baratas, formigas, moscas e gorgulhos. Tinea, Teniola e Trichophaga são traças da roupa, põem ovos em agasalhos, as larvas que nascem comem e destroem as roupas, também se alimentam de peles, tapetes e frutos secos. O antreno é um besouro de tapete, é um necrófago que come matéria animal em decomposição, mas suas larvas destroem tapetes e espécimes biológicos preservados.

Tenebrio é o besouro da farinha, suas larvas são as larvas da farinha, comem farinha, farinha e grãos armazenados, como o arroz. Lepisma, o peixe prateado e Liposcelis, o piolho do livro vivem e destroem livros e manuscritos antigos. Cupins, as formigas brancas causam destruição indescritível de livros, tapetes, móveis e marcenaria de edifícios.

3. Prejudicial para animais domésticos:

Glossina, a mosca tsé-tsé, transmite o Trypanosoma brucei, que causa nagana em cavalos. Tabanus e Stomoxys, as moscas sugadoras de sangue injetam Trypanosoma evansi em cavalos e gado, o que causa surra na Índia.

As larvas de Hypoderma, a mosca warble perfuram abaixo da pele dos bois e fazem buracos para respirar, então passam pela garganta e novamente perfuram a pele nas laterais da espinha para formar inchaços, eles não só ferem a pele, mas também reduzem o suprimento de carne e leite.

Gasterophilus, a mosca bota ovos no cabelo de cavalo, as larvas entram no estômago em grande número. Melófago, o carrapato das ovelhas e Hippobosca, a mosca da floresta do gado e dos cavalos, suga o sangue de seus hospedeiros e freqüentemente causa hemorragia. Menopon, o piolho da galinha suga sangue e causa a destruição das aves.

4. Prejudicial às colheitas:

Muitos insetos danificam as árvores da floresta, o cultivo de safras agrícolas, frutas e grãos armazenados; os danos que causam anualmente chegam a milhões de rúpias.

O número de tais insetos é incontável, eles são principalmente Lepidoptera, Coleoptera, Diptera e Hemiptera. Euproctis, a mariposa da cauda marrom e Lymantria, a mariposa cigana são pragas graves das árvores de sombra e folhagem, suas larvas são uma ameaça e destroem as árvores da floresta. Myetiola, a mosca de Hesse, é uma mosca de pequeno porte, suas larvas danificam as plantas de trigo.

As larvas de dois lepidópteros Chilo na Índia e Diatraea na América perfuram os caules da cana-de-açúcar e causam muitos danos. Pyrilla, um hopper de folhas de cana-de-açúcar hemíptero, suga o caldo da cana, tanto na fase adulta quanto na ninfa, causando grande perda de açúcar.

Pyrausta é uma mariposa encontrada em todo o mundo, mas especialmente abundante nos trópicos, suas larvas conhecidas como brocas do milho são notórias por perfurarem caules e frutos de milho (milho). Nephotettix, o funil do arroz indiano e Leptocorisa, a praga oriental do arroz e do painço são Hemiptera, atacam o arroz em grande número comendo as folhas e as espigas.

As larvas de Schoenobius, uma mariposa perfurou o caule das plantas de arroz na Índia, elas matam as plantas. As ninfas e adultos de Hieroglyphus, um ortóptero, comem os brotos em crescimento das plantas de arroz, evitando assim a formação de grãos.

Dysdercus, o percevejo do algodão indiano, Oxycarenus, o percevejo do algodão egípcio e Antônomo o gorgulho do algodão são muito prejudiciais ao algodão, eles mancham e destroem as cápsulas do algodão, Aphis, um hemíptero, é uma praga séria do algodão na Índia, as pragas frequentemente atacam as plantas de algodão em grande número, fazendo com que as plantas murchem e morram.

As larvas de dois lepidópteros, Agrotis e Gnorimoschema, são vermes de corte de batata na Índia, o primeiro se alimenta de folhas de batata e corta os caules, enquanto as larvas deste último comem as batatas no campo e nas lojas, as larvas também atacam o tabaco e os tomates . As larvas de Agrotis também são destrutivas para ervilhas, repolho, tabaco, amendoim, trigo e couve-flor.

As larvas de alguns coleópteros são chamadas de vermes de arame, como Agriotis e Limonius, alimentam-se de raízes e são extremamente destrutivas para cereais, raízes e gramíneas. Muitos insetos e suas larvas destroem os vegetais na Índia.

Siphocoryne é um aphis que se alimenta de folhas de repolho Anasa, o percevejo é destrutivo para plantas cucurbitáceas Earias a lagarta manchada destrói ladyfingers Aulacophora, o besouro vermelho se alimenta de abóboras as larvas de Bruchus, um besouro perfura vagens de feijão e ervilhas matando as sementes .

Muitos insetos atacam as árvores frutíferas, danificam raízes, troncos, caules, folhas, inflorescências e frutos. Drosicha, uma cochonilha causa destruição de mangas, ameixas, mamão, jaca, peras e frutas cítricas na Índia. As ninfas e adultos de Ideocerus, um funil da folha de manga, atacam a inflorescência e sugam a seiva, portanto, causam danos tremendos ao impedir a formação do fruto da manga.

A lara da mosca Contarinia se alimenta de peras jovens que logo se deterioram. Psylla, um inseto da maçã, põe ovos na macieira e na pereira, as ninfas na eclosão danificam a flor e atira as larvas do antônomo, um besouro também destrói as flores da maçã e evita a formação do fruto. Nysius, um bug é muito destrutivo para vários tipos de árvores frutíferas.

Muitas mariposas, lagartas e besouros causam muitos danos aos grãos armazenados: dois besouros Tenebrio e Tribolium têm hábitos semelhantes e são comumente encontrados em armazéns e celeiros, o primeiro é encontrado em todas as fases da farinha, farinha e produtos armazenados, suas larvas são conhecidas como minhocas. Tribolium come trigo e grãos armazenados. Calandra, um gorgulho perfura grãos de arroz e outros grãos armazenados na Índia.


Introdução

Ecologistas há muito reconheceram o papel dos insumos derivados terrestres de material vegetal e invertebrados para riachos, no entanto, mais recentemente o foco voltou-se para o fluxo de materiais e organismos na direção oposta, do riacho para a terra (Baxter et al., 2005, Sabo & amp Hoekman, 2015). A emergência de insetos aquáticos na forma aérea adulta representa um importante elo entre riachos e habitats ribeirinhos adjacentes, facilitando o fluxo de energia e nutrientes das cadeias alimentares aquáticas para as terrestres. Os insetos aquáticos adultos são importantes subsídios alimentares para uma variedade de predadores ribeirinhos, incluindo lagartos, pássaros, morcegos e aranhas (Baxter et al., 2005). Algumas estimativas indicam que apenas cerca de 3 por cento da biomassa de insetos aquáticos emergidos retorna ao riacho para botar ovos porque a maioria é consumida (Jackson & amp Fisher, 1986). O foco aqui está em um predador específico, a aranha, porque é relativamente fácil de observar e identificar. Populações de várias aranhas são conhecidas por rastrear de perto a emergência de insetos aquáticos (Marzcak & amp Richardson, 2007). A família Tetragnathidae, devido à sua alta mobilidade, pode explorar curtos períodos de emergência em áreas localizadas. Na verdade, a contagem de aranhas pode ser um método útil para avaliar a integridade do riacho e a qualidade do habitat, além de exigir menos mão de obra do que outros métodos de amostragem que se concentram em invertebrados ou peixes (Benjamin et al., 2011).

Apresentamos um guia para um laboratório baseado em investigação e aulas de campo para cursos de graduação em biologia em qualquer nível. Os alunos devem ter uma compreensão básica do método científico e uma formação no nível de biologia do ensino médio, mas com mais detalhes adicionados, esta lição pode ser usada para ensinar alunos sem nenhum conhecimento preexistente dos tópicos abordados. O foco está nas ligações entre habitats dentro dos ecossistemas, abordando especificamente a questão: Qual é o papel da emergência de insetos na conexão de habitats e organismos aquáticos e terrestres? O desafio é mudar a forma como os alunos pensam sobre o ambiente em que vivemos: não como um quebra-cabeça organizado construído a partir de peças discretas com limites definidos, mas sim como uma sopa colorida, composta por várias camadas de sabor e um sabor que se torna mais definido quanto mais tempo você o mexe.


Brood X Cicadas estão finalmente surgindo

Kate Wong é editor sênior de evolução e ecologia da Americano científico.

Cherie Sinnen é um ilustrador freelance baseado na Califórnia.

Neste exato instante, em quintais e florestas em todo o leste dos Estados Unidos, um dos maiores espetáculos da natureza está acontecendo. Embora possa faltar a majestade épica da migração de gnus no Serengeti ou a beleza serena da temporada de flores de cerejeira no Japão, este evento não é menos inspirador. I & rsquom falando sobre o surgimento das cigarras Brood X.

A cada 17 anos, os bilhões de constituintes da Ninhada X túneis que saem de seus covis subterrâneos para passar seus últimos dias festejando ao sol. Esta geração começou em 2004, quando o Facebook existia apenas na Universidade de Harvard e Amigos exibiu seu último episódio. As ninfas da cigarra recém-nascidas caíram das árvores e se enterraram na terra. Eles estão no subsolo desde então, alimentando-se da seiva das raízes de gramíneas e árvores e amadurecendo lentamente. Toda essa preparação tem levado a este momento em que eles vêm à tona em massa & mdashup para 1,4 milhão de cigarras por acre & mdashto mudam para sua forma adulta, cantam sua canção de amor ensurdecedora e produzem a próxima geração antes de morrer apenas algumas semanas depois.

Para os primeiros colonizadores europeus na América do Norte, o súbito aparecimento desses insetos em grande número trouxe à mente os gafanhotos da infâmia bíblica. Mas, enquanto os gafanhotos são gafanhotos que formam enxames gigantescos e viajam longas distâncias, devorando plantações em uma escala devastadora, as cigarras pertencem a uma ordem totalmente diferente de insetos. Eles não enxameiam e são péssimos voadores, normalmente viajando não mais do que várias centenas de metros. Além disso, eles representam pouca ameaça para as plantas porque não comem tecidos vegetais. As fêmeas fazem incisões nos galhos para seus ovos, o que pode enfraquecer as mudas, mas não as árvores e arbustos maduros.

Quase 3.400 espécies de cigarras existem em todo o mundo. Mas as cigarras periódicas que surgem em massa uma vez a cada 17 ou 13 anos são exclusivas do leste dos EUA. As cigarras de 17 anos vivem no norte, e as cigarras de 13 anos são encontradas no sul e no vale do Mississippi. As três espécies de cigarras de 17 anos e mdashMagicicada septendecim, M. cassinii e M. septendecula& mdashform coortes de espécies mistas chamadas ninhadas cujos membros surgem como um relógio no mesmo horário. As ninhadas são identificadas por algarismos romanos. Brood X é a maior das 12 ninhadas de cigarras de 17 anos, que surgem em anos diferentes.

Os ciclos de vida periódicos dessas cigarras, com suas longas fases de desenvolvimento e emergências sincronizadas, há muito tempo cativam os cientistas. A maioria das outras cigarras estudadas até agora têm ciclos de vida de três a cinco anos, diz Chris Simon, da Universidade de Connecticut. Suas ninfas crescem em taxas diferentes, dependendo de fatores genéticos e ambientais, e elas marcam sua saída do subsolo assim que alcançam um certo tamanho corporal e nível de desenvolvimento. Como resultado, a prole de qualquer fêmea surge em anos diferentes, explica ela. As cigarras periódicas, em contraste, permanecem embaixo do solo por um período fixo de tempo, independentemente de quando atingem o tamanho máximo, e então emergem juntas.

Exatamente como as cigarras periódicas passaram a ter esses padrões únicos de história de vida é uma área de pesquisa ativa. As análises de DNA sugerem uma linha de tempo aproximada de sua evolução. O último ancestral comum de todos os vivos Magicicada as espécies se ramificaram em duas linhagens há cerca de 3,9 milhões de anos, durante a época do Plioceno. Um desses ramos divergiu 1,5 milhão de anos depois, durante o Pleistoceno. As três linhagens resultantes deram origem às sete espécies de cigarras de 13 e 17 anos vivas hoje. Por que essas cigarras se estabeleceram em esquemas de 13 e 17 anos é desconhecido. Uma hipótese sustenta que ter longos ciclos de números primos pode aumentar suas chances de sobrevivência ao compensar sua emergência de explosões de população de predadores que ocorrem com mais frequência e em ciclos de números compostos. Mas as duas outras cigarras periódicas conhecidas & mdashone em Fiji e a outra na Índia & mdashemergem em intervalos de oito e quatro anos, respectivamente.

Os pesquisadores propuseram que as cigarras periódicas evoluíram de cigarras não periódicas trocando um cronograma de emergência baseado no tamanho por um baseado na idade e estendendo o período de desenvolvimento. A mudança climática provavelmente ajudou a impulsionar essa mudança. As cigarras periódicas são sensíveis à temperatura e mdashit determina a duração da estação de crescimento. Durante o Pleistoceno, as temperaturas de resfriamento teriam retardado o desenvolvimento juvenil em média, mas aumentado a variação no período de crescimento, tornando o momento da emergência dos adultos nas cigarras ancestrais ainda mais variável do que antes. Com a redução resultante na densidade de cigarras adultas emergindo em qualquer ano, as oportunidades de acasalamento teriam diminuído. Sob tais condições, mudar de uma estratégia de emergência baseada no tamanho para uma baseada na idade, em que os insetos permanecem subterrâneos por um longo tempo e então emergem simultaneamente, aumentaria a densidade da população adulta na emergência e, portanto, suas oportunidades de encontrar parceiros e se reproduzir.

Emergir simultaneamente em grande número também oprime os predadores. Conseqüentemente, mesmo depois que os pássaros, mamíferos e peixes se saciaram dos insetos rechonchudos e indefesos, muitas cigarras permaneceram para produzir a próxima geração.

As mudanças climáticas também moldaram a distribuição das ninhadas. À medida que os mantos de gelo da América do Norte avançaram e recuaram nos últimos 20.000 anos, as florestas decíduas que habitam as cigarras encolheram e se expandiram. As ninhadas evoluíram em resposta a esses ciclos de resfriamento-aquecimento. Gene Kritsky, da Mount St. Joseph University em Cincinnati, Ohio, aponta a Brood X na parte oeste de seu estado como exemplo. Vinte mil anos atrás, os mantos de gelo se estendiam até o norte de onde hoje fica Cincinnati. Como a terra estava coberta de gelo, não havia florestas e, portanto, cigarras no oeste de Ohio naquela época. Por volta de 14.000 anos atrás, no entanto, o manto de gelo recuou para o norte. "As florestas chegaram e as cigarras periódicas vieram com elas", explica Kritsky. Ohio hospeda três outras ninhadas de cigarras de 17 anos, cada uma ocupando sua própria região do estado. & ldquoA distribuição em Ohio de cigarras de 17 anos corresponde às regiões fisiográficas criadas pelas eras glaciais & rdquo, observa ele.

Periodical cicadas have been able to adapt to climate change in part because they have some plasticity in their life-cycle length: they can accelerate or decelerate their emergence schedules by four-year increments. But this flexibility does not assure their long-term survival. Brood XI has been extinct since around 1954 others are waning. The main threat is habitat loss, according to Kritsky. In 1919 the U.S. Department of Agriculture predicted the demise of Brood X as a result of deforestation.

Mapping periodical cicada emergences helps scientists gauge how the broods are faring. Researchers have asked the public to report sightings for decades&mdashin the old days via postcard and later by phone and e-mail. Now they are crowdsourcing data with an app that Kritsky and his colleagues developed, called Cicada Safari, that allows people to submit pictures and videos of any cicadas they encounter and view a map of the Brood X emergence in real time as it unfolds. &ldquoIn 1902 the USDA based its map on just under 1,000 postcards it received,&rdquo Kritsky says. This year, through the app, &ldquowe&rsquore hoping to get 50,000 photographs.&rdquo A fitting send-off for the Brood X class of 2021.


WHAT RUSTLING INSECTS GIVE AWAY

Foraging in the dark is challenging, but not when you're equipped with echolocation. Plucking insects from the open air is simple for bats. But it's much trickier hunting at the forest edge. Detecting an insect amongst the barrage of reflections from the surroundings seems almost impossible. So how do echolocating bats locate tasty treats on the forest floor? Björn Siemers from the Max Plank Institute of Ornithology explains that some bats tune their acute hearing to the tiny rustling sounds made by insects. But how much of an effect does the material that an insect is clambering over have on the tell-tale sound it makes? And what could an approaching bat learn about its victim from its rustling? Siemers and his students, Holger Goerlitz and Stefan Greif, decided to measure sound volumes as insects scuttled across various natural surfaces to see how the landscape affects their acoustic trail( p. 2799 ).

Starting out in Germany, Siemers and Greif decided to measure the sounds made by insects as they wandered over three different surfaces a beech forest floor, a freshly mown meadow and newly ploughed earth. But the team needed to make their sensitive recordings in a completely silent environment, so they excavated 50 cm square chunks of each surface and transported them back to a soundproof room in the University of Tübingen to record the noises made by wandering carabid beetles. Equipped with exquisitely sensitive recording equipment, Greif waited patiently for the beetles to go about their everyday business, recording their tiny footsteps as they walked over each surface when dry and damp.

Analysing the recordings, Siemers found that the beetles were much nosier ambling through the beech leaf litter than the meadow or bare earth. And when he compared the sound generated by the dry surfaces with that from the same surfaces when damp, the volume doubled across all surfaces. The team also found that the rustling became significantly louder as the beetles walked faster.

But what effect did the beetles' size have on their rustling volumes?Siemers needed to find insects with a wide range of sizes and knew that the Madagascan rainforest is home to some of the most diverse populations of insects on the planet. Collecting beetles and cockroaches ranging in size from a few tens of milligrams up to 10 g, Siemers and Goerlitz recorded the sounds generated by the animals as they walked across dry leaf litter, bark or sand and found that the larger beetles made louder rustling noises. Also, the volume increase was more significant for larger creatures on noisy leaf litter than sand, with relatively small increases in the insects' size generating significantly larger sound volumes.

So what does all this mean for a ravenous bat hunting for a snack? Siemers explains that given the way sounds fade as you move further from their source,a beetle clambering over dry leaf litter could be heard eight times further away than another ambling over dry soil. He also suspects that an approaching bat could distinguish between a millipede and a six-legged beetle, but probably couldn't differentiate between a spider and a beetle. And if the bat knew a little about the nature of the surface beneath the insect, it might even be able to estimate its size, all crucial information for helping a bat to decide whether it's worth snatching that snack.


14 - The egg and embryology

Embryogenesis is the process by which a single egg develops into a multicellular individual. Many of our most important discoveries in understanding the embryonic development of animals, including humans, derive from studies that were first conducted in insects. Some of these discoveries are also now being applied in the fields of medicine and agriculture. As discussed in Chapters 12 and 13, all future offspring produced by insects derive from specialized progenitor cells called germ cells, which migrate to the gonads, where they differentiate into gametes. The gametes produced by females are called oocytes (eggs), while the gametes produced by males are called spermatozoa (sperm). Most insects begin their embryonic development when genetic material from an egg and sperm fuse through the process of fertilization to form a zygote. The zygote then divides mitotically to produce all of the different cells that comprise the body of the nymph (exopterygote/hemimetabolous species) or larva (endopterygote/holometabolous species), which will hatch from the egg. Embryogenesis proceeds through a similar series of steps in most insect species, but there are also a number of variations that in some cases are associated with unique life histories. In this chapter we first summarize key morphological and functional features of insect eggs (Section 14.1). Next we discuss the process of embryogenesis, including some of the molecular mechanisms that control axis formation and nutrient acquisition (Sections 14.2 and 14.3). We then consider sex determination (Section 14.4) and end the chapter by discussing parthenogenesis (Section 14.5), pedogenesis (Section 14.6) and other unique forms of embryonic development.

Most insects produce large eggs relative to their own size. This is due to a majority of insects packaging their eggs with large amounts of yolk, which serves as the source of nutrients for growth and development of the embryo. In general, the eggs of Endopterygota contain less yolk and are smaller than those of Exopterygota. To some extent this may reflect differences associated with ovariole type (Section 13.2.1). For example, in two locust (Orthoptera) species, which have panoistic ovarioles, each egg weighs about 0.5% of female weight among insects with telotrophic ovarioles, the egg of Trialeurodes vaporarium (Hemiptera) is over 1% of the female weight and that of Callosobruchus maculata (Coleoptera) 0.6%. By contrast, among insects with polytrophic ovarioles, comparable figures for Apis mellifera (Hymenoptera) and Grammia geneura (Lepidoptera) are 0.07% and 0.11%, respectively.


Resultados

Effect of temperature on biological parameters of D. indica

The results showed that temperature had a significant effect on the developmental time of different immature and adult stages, i.e., egg, 1st instar larvae, 2nd instar larvae, 3rd instar larvae, 4th instar larvae, 5th instar larvae, prepupa, pupa, adult, male adult, female adult, total developmental period of larvae, egg to adult emergence (developmental time), and egg to adult death (total). In the 1st, 2nd, and 5th larval instars, prepupae, and total larval period, developmental period increased slightly as temperature moved from 25 to 30஬, and then decreased at 35஬ ( Table 1 ). Our results are in agreement with the results of Peter and David (1992) . However, Kinjo and Arakaki (2002) found that the development of this pest slowed down at high temperatures, and the development time at 35஬ was significantly greater than 30஬. At 30஬, the developmental time from egg to adult emergence in this study (19.91 days) was close to the 18.2 days reported in a Japanese population of D. indica ( Kinjo and Arakaki 2002 ), and lower than the 23.4 days re- reported in an Indian population ( Peter and David 1992 ). The temperature for shortest developmental time in this study (35஬) was greater than the Japanese population (30஬) and lower than Indian population (40஬). The variation among these temperatures may be due to the effect of host plant on developmental time of D. indica.Ravi et al. (1998) studied the effect of several species of cucurbits on the development of D. indica , and Shin et al. (2002) investigated the effect of five different host plants (cucumber, pumpkin, watermelon, oriental melon, and melon) on the biological properties of this pest, and both concluded that the host type had a significant effect on development and reproduction of this pest. Differences in the developmental time of D. indica in different regions could also be attributed to geographical race, type of host, and laboratory conditions. Sex ratio increased proportionally with increases in tem- temperature from 20 to 35஬ and was greatest at 35஬, but the increase was not significant ( Table 1 ).

Tabela 1.

Mean (± SE) developmental period of Diaphania indica at four different temperatures.

Different letters in rows indicate a significant difference at the 5% level according to Duncan’s multiple range test. TDL = total developmental period of larva DT = developmental time (egg to adult emergence), T = total (egg to adult death).

Effect of temperature on mortality of various developmental stages of D. indica

The temperature did not have a significant effect on the mortality of immature stages, i.e., egg, 1st instar larvae, 2nd instar larvae, 3rd instar larvae, 4th instar larvae, 5th instar larvae, prepupa, and pupa ( Table 2 ). However, adult mortality was significantly affected by different temperatures. Maximum adult mortality was recorded at 30஬ ( Table 2 ).

Mesa 2.

Mean (± SE) mortality of Diaphania indica at four different temperatures.

Different letters in rows indicate a significant difference at the 5% level according to Duncan’s multiple range tests.

Thermal requirements for development of D. indica

The effect of different temperatures on the developmental rate of D. indica for all stages is shown in Table 3 . The observed pupal developmental time at 35ଌ was longer than predicted by the linear relationship between developmental rate and temperature. Thus, the data for this temperature were not included when the linear regression equation was used to obtain the lower temperature threshold and thermal constant. The results are in agreement with Shimizu (2000) , who reported that the lower temperature threshold and the thermal constant of egg to adult emergence of D. indica were 12.3஬ and 357.0 DD, respectively, on artificial diet. Kinjo and Arakaki (2002) recorded the highest lower temperature threshold for pupa (14.9஬) and the lowest lower temperature threshold for larvae (12.0஬) with thermal constants of 17.24 and 82.6 DD, respectively. In that study, the lower temperature threshold and the thermal constant for development of the egg to adult emergence were determined to be 13.5ଌ and 294.1 DD, respectively. In another investigation, the thermal constant and the lower temperature threshold of egg to adult emergence were determined to be 12.05஬ and 454.55 DD, respectively ( Peter and David 1992 ). Due to large climate changes between different regions of D. indica distribution, it is likely that the local populations or strains have adapted to these conditions. In conclusion, the results of our study suggest that 35஬, which was correlated with the lowest developmental time and the highest sex ratio, is the best temperature for rearing of D. indica na região. These results will provide insight into improving pest control.

Tabela 3.

The lower developmental threshold (T0) and thermal constant K (DD) of Diaphania indica at four different temperatures.

DD = degree days DT = developmental time (egg to adult emergence), T = total (egg to adult death).


Coccinellidae

Coccinellidae ( / ˌ k ɒ k s ɪ ˈ n ɛ l ɪ ˌ d iː / ) [3] is a widespread family of small beetles ranging in size from 0.8 to 18 mm (0.03 to 0.71 in). [4] The family is commonly known as joaninhas in North America and joaninhas in Britain and other parts of the English-speaking world. Entomologists prefer the names ladybird beetles ou joaninhas as these insects are not classified as true bugs. [5]

The majority of coccinellid species are generally considered beneficial insects, because many species prey on herbivorous hemipterans such as aphids or scale insects, which are agricultural pests. Many coccinellids lay their eggs directly in aphid and scale insect colonies in order to ensure their larvae have an immediate food source. [6] However, some species do have unwelcome effects among these, the most prominent are of the subfamily Epilachninae (which includes the Mexican bean beetle), which are herbivorous themselves. Usually, epilachnines are only minor agricultural pests, eating the leaves of grain, potatoes, beans, and various other crops, but their numbers can increase explosively in years when their natural enemies, such as parasitoid wasps that attack their eggs, are few. In such situations, they can do major crop damage. They occur in practically all the major crop-producing regions of temperate and tropical countries.


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